Biotecnología Médica y Molecular – Resumen de Conceptos Clave

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Tarjetas de estudio en formato pregunta-respuesta que abarcan los principales conceptos de diagnóstico molecular, inmunoensayos, proteínas terapéuticas, biotecnología de anticuerpos, vacunas, edición génica, secuenciación de nueva generación y biotecnología animal y celular.

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53 Terms

1
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¿Qué cuatro características fundamentales debe reunir un método de diagnóstico molecular?

Alta especificidad, alta sensibilidad, bajo costo y rapidez en la obtención de resultados.

2
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¿Cómo se define un biomarcador de enfermedad?

Molécula presente en tejidos o fluidos de individuos enfermos que muestra diferencias cuantitativas o cualitativas respecto a tejidos normales.

3
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¿Qué ventaja aportan las proteínas glicosiladas como biomarcadores?

Mayor estabilidad y capacidad de interacción específica con receptores celulares.

4
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¿Cuáles son las dos regiones funcionales de un anticuerpo y su función principal?

Región constante (efectora, determina isotipo) y región variable (reconocimiento del antígeno).

5
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¿Qué son los CDR en un anticuerpo?

Loops hipervariables dentro de la región variable que conforman el sitio de unión al epítopo.

6
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¿En qué consiste la producción de anticuerpos policlonales?

Inmunizar un animal, extraer suero tras varias dosis y obtener una mezcla de anticuerpos contra distintos epítopos del antígeno.

7
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¿Para qué se realiza un ELISA de titulaje en antisuero policlonal?

Para determinar la mayor dilución del suero que aún muestra unión antígeno-anticuerpo (título).

8
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¿Cuál es la enzima y el principio de detección más común en ELISA indirecto?

Una enzima unida al anticuerpo secundario que convierte un sustrato incoloro en producto coloreado.

9
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¿Qué innovación introdujo la tecnología de hibridomas de César Milstein?

La obtención de anticuerpos monoclonales de única especificidad y afinidad constante.

10
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Nombre los tres pasos básicos para generar un anticuerpo monoclonal.

1) Inmunización y extracción de bazo, 2) Fusión de linfocitos B con células de mieloma, 3) Selección de clones productores específicos.

11
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¿Cómo funciona un ELISA tipo sándwich?

Un anticuerpo de captura inmovilizado retiene el antígeno; un segundo anticuerpo marcado contra otro epítopo lo detecta generando señal.

12
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En el test de embarazo, ¿qué anticuerpos se encuentran en la zona de captura y en la de control?

Zona de captura: anticuerpos policlonales anti-hCG; zona de control: anticuerpos anti-IgG que reconocen el anticuerpo monoclonal marcado.

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¿Qué molécula se detecta para seguimiento de cáncer de ovario y con qué plataforma?

Proteína HE4 mediante ELISA de captura con anticuerpos monoclonales y unión biotina-estreptavidina.

14
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Explique diagnóstico directo vs. indirecto con un ejemplo.

Directo detecta al patógeno (ej. ARN viral); indirecto detecta consecuencias (ej. anticuerpos o hCG en embarazo).

15
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Enumere los cuatro pasos del Western Blot clásico.

1) SDS-PAGE, 2) Transferencia a membrana, 3) Bloqueo e incubación con anticuerpos, 4) Detección enzimática o quimioluminiscente.

16
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¿Por qué suelen usarse anticuerpos policlonales en Western Blot?

Porque la proteína está desnaturalizada y se necesitan anticuerpos que reconozcan múltiples epítopos lineales.

17
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Indique dos ventajas y dos limitaciones del método Western Blot.

Ventajas: alta especificidad y confirmación de tamaño. Limitaciones: necesidad de anticuerpos de calidad y cuantificación relativa.

18
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¿Qué son las LFIA (tiras de flujo lateral) y cuál fue su primera gran aplicación?

Ensayos de inmunocromatografía rápidos; la primera aplicación masiva fue la tira reactiva de embarazo.

19
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Defina proteína terapéutica recombinante.

Proteína producida por ingeniería genética utilizada como fármaco para tratar o prevenir enfermedades.

20
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¿Qué fases clínicas debe superar un medicamento nuevo?

Fase 1 (seguridad), Fase 2 (dosis/eficacia inicial), Fase 3 (eficacia amplia y comparación), antes de la aprobación.

21
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Diferencie anticuerpo quimérico y humanizado.

Quimérico: región variable murina completa + constante humana (~70 % humano). Humanizado: solo CDR murinos injertados en marco humano (>90 % humano).

22
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¿Qué indica el sufijo "-xi" en la nomenclatura de anticuerpos monoclonales?

Que el anticuerpo es quimérico.

23
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¿Qué es un nanobody y mencione una ventaja clave.

Dominio variable de anticuerpo de camélido de cadena pesada; ventaja: tamaño pequeño y alta estabilidad, incluso vía oral.

24
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¿Cómo se prolonga la vida media de proteínas terapéuticas como IFN o hGH?

Pegilación (unión de PEG) o fusión con dominios/albúmina que aumentan tamaño y reducen depuración.

25
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¿Qué enzima recombinante se utiliza en fibrosis quística y qué mutación le mejoró la actividad?

DNAsa I; mutaciones puntuales que reducen afinidad por actina sin afectar la degradación de ADN.

26
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¿Cuál es la ventaja de usar Lactococcus lactis como vector terapéutico?

Es no patógeno, secreta proteínas al lumen intestinal y puede administrar terapias como IL-10 de forma oral.

27
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Explique totipotencia, pluripotencia y multipotencia.

Totipotente forma todo organismo + anexos; pluripotente forma los tres linajes embrionarios; multipotente origina varios tipos relacionados de un tejido.

28
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¿Qué ensayo demuestra la pluripotencia de células madre humanas en ratón?

Formación de teratomas que contienen tejidos derivados de ectodermo, mesodermo y endodermo.

29
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¿Qué factores de Yamanaka reprograman células somáticas a iPS?

Oct4, Sox2, Klf4 y c-Myc.

30
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Mencione una ventaja y una desventaja de las iPS.

Ventaja: autólogas, sin problemas éticos. Desventaja: riesgo de tumorigénesis por c-Myc y mutaciones.

31
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¿Cuál es la diferencia principal entre RNAi y CRISPR-Cas9 respecto a la diana molecular?

RNAi actúa sobre ARN mensajero (knock-down); CRISPR edita ADN directamente (knock-out/knock-in).

32
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¿Qué enzima procesa dsRNA en siRNA durante RNAi?

Dicer.

33
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¿Qué complejo usa el siRNA para degradar el mRNA objetivo?

Complejo RISC (RNA-Induced Silencing Complex).

34
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¿Qué requisito de secuencia necesita Cas9 para cortar ADN?

La presencia adyacente de un motivo PAM (ej. NGG para SpCas9).

35
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Describa brevemente la reparación NHEJ tras un corte de Cas9.

Une los extremos rotos generando inserciones/deleciones que pueden causar pérdida de marco y knockout génico.

36
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¿Qué aplicación permite HDR en edición génica?

Insertar o corregir secuencias específicas usando un templado homólogo diseñado.

37
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¿Cuál es una técnica sencilla para verificar edición CRISPR mediante digestión enzimática?

RFLP: si el sitio de restricción fue mutado por Cas9, la enzima ya no corta el amplicón PCR.

38
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Entre RNAi y CRISPR, ¿cuál suele tener mayor problema de off-target en humanos?

RNAi presenta mayor tasa de off-target por homología parcial con otros mRNAs.

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Defina secuenciación de nueva generación (NGS).

Conjunto de métodos de secuenciación masiva en paralelo que generan millones de lecturas a bajo costo y alta velocidad.

40
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¿Qué función cumplen los adaptadores en NGS?

Permiten anclar fragmentos al flowcell, amplificarlos y asignar barcodes para identificar muestras múltiples.

41
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¿Cuál es el principio de la plataforma Illumina?

Secuenciación por síntesis: incorporación secuencial de nucleótidos fluorescentes bloqueados en clusters amplificados sobre un flowcell.

42
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¿Qué ventaja ofrece la lectura paired-end de Illumina?

Secuencia ambos extremos del fragmento, facilitando ensamblaje y detección de inserciones o deleciones.

43
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Nombre una tecnología de tercera generación y su característica clave.

PacBio SMRT: lectura de moléculas individuales con long reads >10 kb en tiempo real.

44
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¿Por qué las lecturas largas son útiles en ensamblado de novo?

Porque atraviesan regiones repetitivas del genoma reduciendo ambigüedades y gaps.

45
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¿Qué es la cobertura (coverage) en secuenciación y por qué importa?

Número medio de veces que se lee cada base; mayor cobertura reduce errores y permite detectar variantes poco frecuentes.

46
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Explique el concepto de RNA-seq.

Secuenciación del transcriptoma para cuantificar niveles de expresión y descubrir isoformas o genes nuevos.

47
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¿Qué representa un heatmap de expresión génica?

Visualización de niveles relativos de transcripción (colores) de múltiples genes entre diferentes muestras o condiciones.

48
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En microarrays, ¿qué significa un fold-change log2 de +2?

Que el gen está expresado cuatro veces más en la muestra experimental respecto al control.

49
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¿Cuál es la ventaja de usar códigos de barras (barcodes) en NGS?

Permiten mezclar múltiples libraries en la misma corrida y luego separar las lecturas por muestra.

50
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¿Para qué sirve la técnica Chip-on-Chip o ChIP-seq?

Identificar regiones de unión de proteínas (p. ej. factores de transcripción) al ADN en el genoma.

51
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Durante la producción de animales transgénicos, ¿qué técnica de 5ª generación introduce genes o los silencia de forma precisa?

CRISPR/Cas, TALENs o Zinc-Finger Nucleases para edición dirigida.

52
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¿Cuál es la utilidad principal de la superovulación en programas de transferencia embrionaria bovina?

Incrementar el número de ovocitos/embriones disponibles por hembra y así aumentar la descendencia de animales superiores.

53
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¿En qué consiste la clonación por transferencia nuclear (SCNT)?

Reemplazar el núcleo de un ovocito enucleado por el núcleo de una célula somática del animal a clonar para generar un embrión genéticamente idéntico.