bio cel chap 2

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1
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Quel est le but principal de la recherche biomedicale en biologie cellulaire ?

Ameliorer la santé humaine en etudiant les dysfocntionnement cellulaires qui causent les pathologie

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Quels sont les 3 objectifs precis de la demarche experimentale ?

Identification des mécanismes cellulaire impliqués ( protéines, gène, organite)

Identification des causes

Test pharmacologiques

3
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Quels critère discutent le choix d’un modèle d’étude avant le modèle humain ?

La pertinence du modèle, le temps et le cout

4
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Quel animal utilise t on pour l'étude de la mort cellulaire programmée ?

La nematode caenorhabditis elegans

5
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Pourquoi utilise t on la mouche drosophila melanogaster comme étude génétique ?

Grace a sa vitesse de reproduction

6
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Quel est l'intérêt principal du modèle de la souris mus musculus ?

Elle permet d’avoir des organismes génétiquement modifiés

7
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Pourquoi utilise t on le cochon comme etudes chirurgicales ?

Car il est proche de l’homme au point de vu anatomique

8
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Quels sont les 2 modèle cellulaire cités et leur application respective ?

Escherichia coli: cout peu élvevé, reproduction rapide, modification génétique facile

Levure saccharomyces cerevisiae: permet l’étude de la regulation des gènes

9
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Quels sont les 4 types de type cellulaire utilisés en biologie cellulaire ?

Les cellulaire primaires, les lignées de cellules immortalisées, les lignées de cellules transformées et les tissus recréés en laboratoire

10
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Quest ce que la culture en suspension pour les bactérie ?

Ensemencer des souches dans un milieu nutritif optimal (27°C, pH controlé, avec ou sans O2)

11
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Quel signe visuel indique la prolifèration bactérienne en suspension ?

Le milieu initialement translucide se trouble

12
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Quest ce que la culture sur support et que permet elle d’obtenir ?

Utiliser une boite de Petri contenant un milieu nutritif gélifié a l’agar pour obtenir une colonie bactérienne ( sous forme de point )

13
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Pour quel type d’etude la culture sur support est elle particulièrement utilisée ?

Dans l’étude de la regulation genique

14
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Quelles est la diff entre bactérie aerobies et anaerobie ?

Les aerobies ont besoin d’oxygène, tandis que les autres non

15
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À partir de quel type de prélèvement de tissu travaille-t-on pour une culture primaire chez les eucaryotes ?

On travaille à partir d'une biopsie (qui peut être cutanée, musculaire, etc.), prélevée sur l'humain ou sur l'animal (ex: tissu du cœur).


16
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En quoi consiste la technique d'obtentions de cellules par "immersion d'un explant" ?

C'est une méthode physique alternative à la digestion enzymatique permettant de laisser les cellules migrer hors d'un petit morceau de tissu prélevé (l'explant) pour obtenir de multiples types cellulaires.

17
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Quelles sont les deux enzymes couramment utilisées pour digérer la matrice extracellulaire d'un tissu ?

La trypsine et la collagénase, qui viennent dégrader les protéines de la matrice extracellulaire.


18
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Quel est le rôle de l'EDTA lors de la phase de digestion chimique d'un tissu ?

C'est un chélateur de cations bivalents (Ca2+(Ca^{2+}, Mg2+Mg^{2+}) et un agent anticoagulant.


19
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Quel est le principe de la centrifugation (méthode physique) pour séparer les éléments figurés du sang déposés sur du ficoll ?

Les éléments se séparent en fonction de la densité des cellules : plus elles sont lourdes (haute densité), plus elles se retrouvent basses dans le tube après centrifugation.


20
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Sur quoi repose la méthode immunologique de purification cellulaire ?

Elle utilise l'interaction spécifique entre des antigènes (marqueurs de surfaces) présents sur la membrane cellulaire et des anticorps spécifiques introduits pour reconnaître uniquement le type cellulaire voulu.


21
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Comment fonctionne l'utilisation d'une bille magnétique couplée à un anticorps pour l'isolement cellulaire ?

Les anticorps fixent les cellules cibles, et la bille magnétique permet de récupérer toutes les cellules liées à l'aide d'un aimant, tandis que les cellules non liées sont éliminées.


22
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•Quels sont les deux dérivés de fluorescence cités pour le tri cellulaire et quelles sont leurs couleurs respectives ?

• La fluorescéine (fluo vert)

• La rhodamine (fluo rouge)

23
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Quel est le principe de la méthode biologique par adhérence différentielle ?

Elle sépare deux types cellulaires en fonction de leur vitesse d'adhérence au fond de la boîte durant le temps d'incubation (un type adhère plus rapidement que l'autre).


24
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Dans le sang, quel type cellulaire n'adhère pas à la boîte de culture, contrairement aux macrophages ?

Les lymphocytes n'adhèrent pas, tandis que les macrophages oui. Un simple rinçage permet donc d'éliminer les lymphocytes et de récupérer le type voulu

25
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Quelle est la caractéristique majeure des cellules très différenciées obtenues en culture primaire ?

Elles ne sont plus capables de se diviser ni de proliférer.


26
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Quels sont les deux exemples de cellules très différenciées cités dans le cours qui peuvent être greffées à des patients diabétiques ?

Les cardiomyocytes et les îlots β\beta -pancréatiques (qui sécrètent l'insuline).


27
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Qu'est-ce que la confluence pour des cellules peu ou non différenciées ?

C'est le moment où les cellules se touchent toutes (les unes à côté des autres) et s'arrêtent de proliférer à cause du manque de place. C'est l'inhibition de contact.

28
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Quel exemple de cellules issues de biopsie cutanée est donné pour illustrer les cellules capables de proliférer jusqu'à la confluence ?

Les fibroblastes.

29
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Qu'est-ce qu'un repiquage (ou passage en culture secondaire) ?

C'est l'action de décoller les cellules arrivées à confluence pour les remettre en suspension et les transférer dans une nouvelle boîte de Pétri afin qu'elles recommencent à proliférer.

30
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Quels sont les deux éléments chimiques ajoutés pour décoller les cellules de leur support lors d'un repiquage et quels sont leurs rôles ?

  • La trypsine : une protéase qui coupe les protéines d'adhérence.

  • L'EDTA : un chélateur qui capture les cations nécessaires à l'adhérence


31
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Pourquoi le milieu de culture est-il souvent de couleur rouge ?

Parce qu'il contient du rouge de phénol, un indicateur de pH qui permet de surveiller et d'éviter l'acidification du milieu due au métabolisme cellulaire.

32
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Qu'est-ce que le sérum de veau fœtal (SVF) et pourquoi parle-t-on de "milieu non défini" lorsqu'on l'utilise ?

C'est un apport non obligatoire en facteurs de croissance (ex: FGF, NGF). On dit qu'il est non défini car on ne connaît pas la concentration exacte de ces facteurs.

33
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Quels sont les rôles respectifs de l'insuline et des antibiotiques (ex: pénicilline) dans le milieu ?

  • L'insuline : promeut la survie et favorise l'absorption du glucose (source d'énergie).

  • Les antibiotiques : empêchent la prolifération des bactéries dans la culture d'eucaryotes.


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Quels éléments de la matrice extracellulaire peuvent recouvrir la boîte de culture pour aider les cellules adhérentes à se fixer ?

Le collagène, la laminine ou la fibronectine.

35
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À quoi sert un Poste de Sécurité Microbiologique (PSM) ?

C'est une enceinte stérile où l'air est filtré avant d'entrer, permettant d'éviter les contaminations lors des manipulations.

36
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Quelles sont les conditions précises d'humidité, de température et de gaz dans une étuve à atmosphère contrôlée ?

Atmosphère humide, température à 37 °C, injection de 5 % de \(CO_{2}\) (pour maintenir le pH constant) et maintien de l'\(O_{2}\) à 20 %.

37
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Quel est l'avantage majeur de la culture de cellules in vitro par rapport au modèle in vivo ?

Elle permet d'obtenir des cellules le plus proche possible de ce qui est retrouvé in vivo.

38
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Quels sont les principaux inconvénients de la culture primaire ?

Elle nécessite une longue préparation, elle est coûteuse, la modification génétique est difficile si les cellules sont déjà différenciées, et il y a des problèmes de viabilité car les cellules sont très fragiles.

39
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Qu'est-ce que la sénescence réplicative ?

  • C'est le phénomène par lequel les cellules prolifèrent de moins en moins vite avec le temps jusqu'à l'arrêt complet de la prolifération.


40
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Qu'est-ce que la limite de Hayflick ?

C'est le nombre maximal de divisions qu'une cellule peut effectuer avant d'entrer en sénescence, se produisant généralement après 30 à 50 passages cellulaires.

41
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Quelle structure chromosomique explique la sénescence réplicative en se raccourcissant à chaque division ?

  • Les télomères (séquences répétitives situées à l'extrémité des chromosomes).


42
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Quelle enzyme permet de repousser la limite de Hayflick et d'obtenir des lignées cellulaires immortalisées ?

La télomérase, une enzyme capable de rallonger les télomères pour permettre la reprise de la prolifération.

43
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Pourquoi dit-on que les lignées de cellules sont monocouches ?

  • Parce qu'elles recouvrent toute la boîte avec une seule couche de cellules et s'arrêtent de proliférer à confluence (inhibition de contact).


44
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Quel est le grand avantage de la fragilité réduite des lignées secondaires par rapport aux cultures primaires ?

  • Étant beaucoup moins fragiles, elles permettent de réaliser plus facilement des modifications de l'expression des gènes (transfection/infection).


45
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À quelle température et dans quel fluide conserve-t-on les lignées cellulaires par congélation ?

Dans l'azote liquide à -196 °C.

46
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Quels sont les trois types d'agents transformants qui peuvent transformer des cellules saines en lignées tumorales ?

  • Les virus, les agents chimiques cancérigènes ou les radiations.


47
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Comment les lignées transformées se comportent-elles vis-à-vis du support par rapport aux lignées classiques ?

  • Elles croissent en multicouches car elles ont perdu l'inhibition de contact et continuent de proliférer même à confluence.


48
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Pourquoi les cellules cancéreuses ont-elles une indépendance vis-à-vis des facteurs de croissance externes ?

Parce qu'elles sont capables d'en produire elles-mêmes.

49
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Quelles modifications génétiques majeures favorisent la prolifération infinie des lignées transformées ?

  • L'activation d'oncogènes (qui stimulent la prolifération) et l'inhibition des gènes suppresseurs de tumeurs.


50
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Quel est l'organisme mondial de référence qui répertorie et conserve les échantillons de lignées cellulaires ?

  • L'ATCC (American Type Culture Collection).


51
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Que sont les cellules HeLa et quelle est leur origine historique ?

  • Ce sont les premières cellules humaines récoltées, provenant d'un cancer du col de l'utérus.


52
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Qu'est-ce qu'un anticorps et de quoi est-il structurellement composé ?

C'est une protéine dirigée contre un antigène du non-soi, composée de deux chaînes légères, de deux chaînes lourdes et de régions variables.

53
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Qu'est-ce qu'un épitope et grâce à quelle structure l'anticorps le reconnaît-il ?

L'épitope est la partie de l'antigène reconnue par l'anticorps grâce à son paratope.

54
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Quelles sont les cellules productrices d'anticorps et en quoi se différencient-elles ?

Ce sont les lymphocytes B, qui se différencient en plasmocytes pour produire de grandes quantités d'anticorps.

55
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Quelle est la différence fondamentale entre des anticorps polyclonaux et monoclonaux ?

  • Polyclonaux : plusieurs anticorps qui reconnaissent un même antigène mais sur des épitopes différents.

  • Monoclonaux : un seul type d'anticorps issu d'un seul clone de lymphocytes B, reconnaissant un unique épitope.


56
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Qu'est-ce qu'un anticorps monoclonal conformationnel ?

C'est un anticorps qui reconnaît une partie de la protéine se repliant dans l'espace (structure tertiaire).

57
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Qu'est-ce qu'un anticorps monoclonal séquentiel ?

C'est un anticorps qui reconnaît une séquence particulière d'acides aminés dans la structure primaire de la protéine.

58
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Que signifie le suffixe -MAB à la fin des noms de médicaments ?

Il signifie Monoclonal Antibody (anticorps monoclonal). Tous les médicaments finissant par -MAB sont des anticorps.

59
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Quel exemple d'anticorps monoclonal est cité pour le traitement anticancéreux du cancer du sein (immunothérapie) ?

Le trastuzumab

60
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D'après les schémas manuscrits, à quoi sert l'ajout d'un "tampon détergent / dénaturant" sur le culot cellulaire ?

Il permet d'effectuer une lyse cellulaire pour libérer la protéine à détecter en la séparant des débris cellulaires.

61
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Quelles sont les deux techniques utilisées pour détecter des protéines membranaires ou intracellulaires mentionnées en bas de page ?

L'immunocytochimie (ICC) ou l'immunocytofluorescence (ICF).

62
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Quelle est la différence entre l'immuno-détection directe et indirecte ?

  • Directe : L'anticorps qui porte la molécule rapporteuse se fixe directement sur la protéine à détecter.

  • Indirecte : Un premier anticorps (primaire) se fixe sur la protéine, puis un second anticorps (secondaire) portant la molécule rapporteuse se fixe sur l'anticorps primaire.


63
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Quelles sont les deux enzymes citées comme molécules rapporteuses ?

La Horse Radish Peroxydase (HRP) et la Phosphatase Alcaline (PA).

64
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Quelles sont les deux molécules fluorescentes citées comme molécules rapporteuses ?

Le Texas Red et la Fluorescéine.

65
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Par quels types d'appareils ou de méthodes réalise-t-on la détection de ces signaux membranaires ?

Par cytométrie en flux ou au microscope à fluorescence.

66
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Quelle est la première étape indispensable pour une technique intracellulaire et quel produit utilise-t-on souvent ?

L'étape de fixation, souvent réalisée au paraformaldéhyde (PAF), pour s'assurer que le contenu cellulaire ne migrera pas par la suite.

67
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Pourquoi doit-on réaliser une étape de perméabilisation juste après la fixation ?

Pour faire des trous dans la membrane afin de permettre à la solution d'anticorps de pénétrer à l'intérieur de la cellule.

68
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Quel est le principe de la technique ELISA (technique en sandwich) ?

Des anticorps sont fixés au fond de plaques de 96 puits, on y verse le lysat (la protéine est capturée), puis on ajoute un second anticorps au-dessus pour la détecter.

69
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Quel est le support de gel utilisé pour le Western-Blot et comment s'y séparent les protéines ?

Un gel de polyacrylamide parcouru par un courant électrique, où les protéines (chargées négativement) migrent et se séparent selon leurs tailles.

70
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Pourquoi est-il obligatoire de transférer les protéines sur une membrane après la migration du Western-Blot ?

Parce qu'il est impossible de mettre des anticorps directement dans le gel ; on ne peut pas y détecter directement les protéines.

71
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Quels sont les deux grands types de paramètres physiques mesurés en cytométrie en flux grâce à la diffraction des faisceaux lumineux ?

La taille cellulaire et la densité ou granulosité (taux d'organites dans la cellule).

72
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Comment met-on en évidence des marqueurs de surface (immunophénotypage) en cytométrie en flux ?

Par immunodétection directe (anticorps primaire fluorescent) ou indirecte (anticorps secondaire fluorescent).

73
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Quelle molécule fluorescente intercalante est citée pour détecter et quantifier l'ADN ?

L'iodure de propidium.

74
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Quelle sonde fluorescente spécifique permet de détecter les paramètres mitochondriaux (masse, potentiel de membrane) ?

Le mitotracker

75
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Dans quel domaine clinique la cytométrie en flux est-elle utilisée pour le diagnostic d'hémopathies ?

En hématologie (notamment via la NFS).

76
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Quel autre nom donne-t-on au trieur de cellules ?

La technique FACS (Fluorescence-Activated Cell Sorting)

77
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Sur quel principe physique repose le tri des cellules après leur passage devant le rayon laser du FACS ?

L'appareil confère une charge électrique (positive ou négative) aux gouttelettes contenant les cellules, ce qui permet de les attirer à différents endroits selon leur charge.

78
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Sur quels types de lignées cellulaires réalise-t-on majoritairement les modifications de gènes ?

Sur les cellules immortalisées ou transformées.

79
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Quelle est la définition exacte de la transfection ?

C'est l'apport d'un gène étranger par un vecteur d'expression non-viral, qui est généralement un plasmide.

80
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Quels sont les deux types de séquences spécifiques apportés par un plasmide modifié in vitro en plus du gène d'intérêt ?

  • Une séquence promotrice forte (pour contrôler l'expression).

  • Un gène de résistance à un antibiotique.


81
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Quelles sont les deux enzymes utilisées pour ouvrir un plasmide puis y intégrer le fragment du gène d'intérêt ?

Une enzyme de restriction (pour retirer un fragment) et une ligase (pour réaliser la jointure).

82
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Comment fonctionne l'introduction d'un gène par un agent lipofectant ?

On utilise des liposomes (lipides cationiques) qui interagissent avec l'ADN du plasmide et les lipides de la membrane pour favoriser l'entrée du gène.

83
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Quel est le principe de la méthode d'électroporation ?

On applique un champ électrique qui conduit à la formation de pores dans la membrane cellulaire, permettant au plasmide d'entrer.

84
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Comment sélectionne-t-on uniquement les cellules correctement transfectées dans la boîte de culture ?

On applique l'antibiotique dans le milieu ; seules les cellules transfectées résistent et survivent, éliminant toutes les autres.

85
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Quelle est la définition exacte de l'infection en biologie cellulaire ?


C'est l'apport d'un gène exogène par un vecteur d'expression de type virale

86
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Quel type de virus à ADN est fréquemment cité et utilisé comme vecteur d'expression pour l'infection ?

Les adénovirus.

87
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Pourquoi produit-on une protéine de fusion (protéine + étiquette) en laboratoire ?

Pour pouvoir étudier et suivre une protéine dont on ne connaît pas l'anticorps spécifique capable de la détecter.

88
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Quelle est la propriété principale de l'étiquette poly-histidine ?

Elle confère une forte affinité pour le nickel, permettant de coupler le nickel à une enzyme (PA ou HRP) pour générer des capacités chromogènes et détecter la protéine.

89
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Quelle étiquette enzymatique possède une forte affinité pour le glutathion et permet de purifier la protéine à l'aide de billes par centrifugation ?

Le GST (Glutathion S-Transférase).

90
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Quel est le grand avantage de l'ajout d'une étiquette de fluorescence comme la GFP (Green Fluorescence Protein) ?

Elle permet de visualiser directement la protéine sous un microscope et de connaître sa localisation précise dans la cellule.

91
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En quoi consiste la technique de la micro-injection ?

Elle utilise un microscope et un contrôleur pour manipuler un bras portant une aiguille fine afin d'injecter directement une protéine dans quelques cellules.

92
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Sur quel type de cellules (adhérentes ou non) réalise-t-on le plus souvent la micro-injection, et que fait-on si elles ne le sont pas ?

Elle se fait le plus souvent sur des cellules adhérentes. Si elles ne sont pas adhérentes, on utilise un mécanisme par aspiration pour les maintenir en place.

93
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Quelle application clinique majeure de la PMA utilise la micro-injection ?

L'ICSI (injection intracytoplasmique de spermatozoïde).

94
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Quel détergent chimique spécifique est mentionné pour l'étape de perméabilisation des protéines intracellulaires (Étape 2) ?

Le Triton X-100 (qui crée des pores dans la membrane après la fixation au paraformaldéhyde).

95
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Quelle molécule fluorescente spécifique utilise-t-on pour mesurer le flux de Ca2+Ca^{2+} (permettant notamment d'observer la contraction musculaire) ?

Le fluo-3.

96
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Sur quel grand principe physique est basée la technique du fractionnement cellulaire ?

Sur la centrifugation différentielle après homogénéisation cellulaire.

97
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Quel est l'élément cellulaire récupéré au fond du tube lors de la première centrifugation à basse vitesse ?

Le noyau (car c'est l'élément non lysé le plus rapide à aller au fond).

98
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Quels organites récupère-t-on au fond du tube lors de la deuxième étape à vitesse moyenne ?

Les mitochondries, les lysosomes et les peroxysomes.

99
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Quels éléments retrouve-t-on au fond du tube après la dernière étape à grande vitesse, et que reste-t-il dans le surnageant ?

  • Au fond : Les microsomes.

  • Dans le surnageant : Les ions, l'eau et les ribosomes.


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Quelle est la règle générale reliant la vitesse de centrifugation et la densité des éléments récupérés ?

Plus on centrifuge vite, plus on récupère des éléments de faible densité.