1/42
Looks like no tags are added yet.
Name | Mastery | Learn | Test | Matching | Spaced | Call with Kai | Chat |
|---|
No analytics yet
Send a link to your students to track their progress
Monomères des AN
Nucléotide estérifiée de l’ose d’un nucléoside par un ou plusieurs acides phosphoriques
Bases pyrimidiques
Simple hétérocycle 6C et 2N en 1 et 3
Cytosine, thymine, uracile
Bases puriques
Double hétérocycle (cycle pyrimidique + cycle imidazole (5C et 2N en 7 et 9)
Aussi appelé imidazopyrimidine
Adénine et guanine
Bases modifiées : dans l’ADN
5-méthylcytosine (ds les îlots CpG des plantes et animaux)
Bases modifiées : ds l’ARN
Xanthine
Hypoxanthine
Dérivés naturels des bases
Dérivés methylés de la xanthine :
alimentation, boissons (caféine → dérivé triméthylé)
usages médicaux (theobromine → chocolat → antioxydant)
Utilité des analogues de bases synthétisées
Marquage expérimental (ex : 5-bromo-désoxyuridine)
Agents thérapeutiques → compétitions bases naturelles pr bloquer mitose ou la multiplication des bactéries (antitumoraux, antibiotiques, antiviraux ; AZT=azathymidine → virus du VIH)
Forme chimique
Double liaison → délocalisation des é π =
stabilisée en config plane
Deux formes cétone ← → énol (pH7 en faveur de cétone)
Spectre d’absorption
Hétérocycles → absorbent la lumière des UV ~260nm
(Détection des dosages en solution)

Désamination oxydatives physiologiques
Amine→cétone
Spontanées
Principalement bases pyrimidiques
cytosine → uracile (problème pr l’ADN)
5-méthylcytosine → thymine
Adénine → hypoxanthine
Guanine → xanthine
Radiations sur les bases
Altération
Ultraviolets : ex dimères de thymine (pontage)
Rayons X/gamma : cassure cycles
Agents chimiques sur les bases
Réactions
Acide nitreux : désamination oxydative
Radicaux libres : dommages oxydatifs
Nucléoside
Base + pentose + liaison covalentes (N-osidique)
Pentose
Ribose dans ARN
2-désoxyribose dans ADN
Sous forme furanose (5C)
Série D
Conformation ß
Liaison avec pyrimidines
Entre C1 et N1
Liaison avec purines
Entre C1 et N9
Numérotation et nomenclature
Bases : 1,2,3…
Oses : 1’,2’,3’…
Suffixe « idine » pour pyrimidiques
Suffixe « osine » pour puriques
Nucléotides
Esters-phosphates de nucléosides
Groupement phosphate porte des charges -
Liaison Ester
Pentose - premier grp phosphate

Liaison anhydride d’acide
Entre les grp phosphates

Nomenclature et rôle
Nom nucléoside + N + 5’ + mono/di/tri phosphate
NMP/NDP/NTP ou dNMP/dNDP/dNTP
Constituants des AN
Biosynthèse des AN (ATP/UTP…)
Donneur énergie, molécule signal, coenzymes
Acides nucléiques
Enchaînement de nucléosides reliés par phosphodiesters
Sucrés, phosphates = squelette désoxyribose phosphate
De 5 vers 3
Liaison phosphodiester
Condensation de 3’OH de l’ose avec 5’P du nucléotide
Présence du 2’OH du ribose → instabilité des liaisons dans l’ARN (+fragile que l’ADN)
Représentation schématisée

Structure spatiale de l’ADN
A-T (2liaisons H) d’un coté et C-G (3liaisons H) de l’autre
Par cristallographie → tridimensionnelle (double hélice avec paires de bases), chaînes antiparallèles
Structure de la double hélice
Orientation antiparallèles (5’→3’ et 3’→5’)
Bases à l’intérieur de l’hélice et ds un même plan
Hélice pas régulière → petits et grands sillons
Intérieur hydrophobe
Extérieur hydrophile et composé de phosphate ionisés

Les ≠ conformations
B (+courante et stable) : enroulement droit, 10paires, pas de 3,4nm, 36°
A : enroulement droit compacte (spores bactériennes et hybrides ARN/ADN)
Z : hélice gauche étirée et en zigzag
Stabilité de l’ADN
Due aux liaisons hydrogène entre bases complémentaires et aux interactions hydrophobes et éléctrostatiques
Possibilité d’adopter différentes conformations
ADN = polyanion
Grps ionisables
PH physiologique → bases pas ionisées, aucune charge
Grp phospohodiester porte fonction acide → a pH physio = charge négative = nbr de nucléotides
Électrophorèse
Haut = grand
Bas = petit
Dénaturation ADN
Séparation en deux chaines ou brins
Température élevée = rupture liaison H entre paires de bases
Effet hyperchrome = augmentation de l’absorption à 260nm
Bicaternaire moins absorbant que monocaténaire
Renaturation
Refroidissement lent et progressif
Si rapide alors pas de reappariement total
→ utilisé dans les PCR, séquencage, hybridation moléculaire
Température de fusion
Via courbe de fusion → point d’inflexion (moitié des molécules dénaturées)
Tm dépend de la longueur des chaines et du pourcentage de paires C-G
~ 94°C pr l’humain
Tm des amorces (18-20 nucléotides) → cycles de dénaturation/renaturation des réactions PDR
ADN circulaire
Virus (longueur ADN = micrometre)
Plasmides (longueur ADN = micrometre)
Mitochondries (longueur ADN = micrometre)
Bactéries (1chromo chez E.coli, longueur ADN = milimetre)
ADN linéaire
Homme (3×10^9 paires de bases pr cellule haploïde, 23 chromo, longueur ADN = mètre)
Drosophile (4 chromo)
ADN eucaryote
46 chromo
~100 à 1000 mitochondires (1 à 2% de la masse totale d’ADN)
ARN viraux
Linéaires, simple brin
Réplication par l’ARN → coronavirus
Réplication par ADN apres rétrotranscription de l’ARN viral → enzyme transcriptase inverse, ARN en ADN (ex : VIH)
ARN eucaryote
Ribosomique (80%)
Transfert (15%)
Messager (<5%) → codent l’ensemble des protéines de la cellule
Autres ARN → IncRNA, snRNA, snoRNA, miRNA (1%)
Autres ARN
IncRNA → fonction un peu inconnue
SnRNA → maturation des ARNm et ARNr (petits ARN nucléaires)
SnoRNA → maturation des ARNr (petits ARN nocléolaires)
MiRNA → régulation et stabilité des ARNm et/ou activité de la synthèse protéique
Double hélice entre ARN ou ADN
Transitoire lors de la rep ou de la trans
Possibilité de boucles, tiges ou épingles à cheveux
Lorsque des bases peuvent s’apparier
Chez E.coli
ARNr → linéaire
ARNt → trèfle
Hydrolyse des AN
Hydrolyse des liaisons phosphodiester par des phosphodiestérases ou des nucléases
Désoxyribonucléases si ADN
Riboxynucléases si ARN
Endonucléases = interieure de la chaine
Exonucléase = extérieur, aux extrémités de la chaine