Präanalytik und Untersuchungsmaterialien

Präanalytische Phase

• Ärztliche Fragestellung
• Testauswahl
• Laboranforderung
• Patientenidentifikation
• Probenentnahme
• Transport
• Untersuchungsmaterial/-identifikation
• Probenannahme/-beurteilung
• Probenaufbereitung
• Probenaliquotierung

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Einflussgrößen/Störfaktoren/Einflussfaktoren

Einflussgrößen

• können Laborbefund verfälschen
• führen in vivo zu Veränderung der Konzentration/Aktivität /Beschaffenheit des Analyten in Probe
• unabhängig vom Analysenverfahren
• unterschieden werden:
    * unveränderliche, unbeeinflussbare Einflussgrößen •
      * Geschlecht - Creatinkinase (bei Männern höher aufgrund höherer Muskelmasse)
      * Erbfaktoren - Personen mit Blutgruppe 0 = niedrigeren von Willebrand-Faktor
      * Ethnie - Schwarzafrikaner haben signifikant niedrigere Leukozytenanzahlen
    * veränderliche, beeinflussbare Einflussgrößen
      * Ernährung - vegetarische Ernährung kann zu Abnahme von Creatin führen, wenn Eigensynthese nicht mehr ausreicht
      * Alkohol - 2-4h nach Konsum Erhöhung von Harnsäure und Lactat, Glukose ist erniedrigt
      * diagnostische Maßnahmen - intramuskuläre Injektion erhöht Creatinkinase- und Myoglobinwert

Störfaktoren

• Sind immer auf Analytik bezogen
• endogene Störfaktoren können physikalisch-chemischen Eigenschaften einer Probe beeinflussen und führen zu Messergebnis, das nicht der in vivo-Konzentration entspricht
• unterschieden werden:

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a) körpereigene Störfaktoren (endogen)

hämolytische Proben:

• Erythrozyten wurden zerstört und Hämoglobin ist ausgetreten
• weitere Stoffe treten aus: Kalium, Transaminasen, Laktatdehydrogenasen

→ führen zu verfälschten Untersuchungsergebnissen durch:

• Einfluss der Stoffe auf Nachweisreaktionen

- Stoffe nehmen selbst an Reaktion teil und führen zu falsch positiven Ergebnissen

• Ursachen hämolytischer Proben:
    * Alterung der Erythrozyten, hämolytische Anämie
    * Thermische oder osmotische Schädigung
    * Toxine (z.B. Arsen, Überdosierung Vit. K bei Neugeborenen)
    * Parasiten, bakterielle Toxine
    * Mechanische Überbeanspruchung (z.B. künstliche Herzklappen)

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ikterische Proben:

• Ikterus: Gelbsucht
• abnorme Erhöhung des Bilirubins
• Bilirubin = Abbauprodukt des Hämoglobins
• bewirkt in pathologischer Konzentration eine dunkelgelbe - braune Verfärbung von Körperflüssigkeiten/Haut
• Interferenzen durch optische Veränderung der Probe bei verschiedenen Messverfahren
• Ursachen ikterischer Proben:
    * prähepatisch z.B. Transfusionszwischenfälle
    * intrahepatisch z.B. Leberschäden
    * posthepatisch z.B. Abflussbehinderungen

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lipämische Proben:

• weißliche Trübung des Blutserum bzw. -plasmas verursacht durch Fette
• Interferenzen bei optischen Messungen
• negativer Effekt auf Affinität von Antikörpern, wichtig bei Antigen-Antikörper-Reaktionen

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• Ursachen lipämischer Proben:
    * Fettstoffwechselstörungen
    * Nahrungsaufnahme
    * Blutentnahme an nicht nüchternen Patienten

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b)     Körperfremde Störfaktoren

• Infusionen
• Antikoagulanzien im Monovettensystem
• Kontaminationen (z.B. Bakterien, Pilze)

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Einflussfaktoren

• beeinflussen Analysenergebnis

a) mechanisch:

• zu lange Stauung
• Starkes Pumpen vor der Abnahme
• Zu schnelles aspirieren
• Schütteln

b) Probennahme

• Ungeeignete Entnahmesysteme (Kanülenvolumen zu gering)
• Falscher Entnahmezeitpunkt
• Unzureichende Durchmischung
• Kontamination

c) Lagerung

• Falsche Temperatur
• Zu lange Lagerzeit

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1. Blut
2. Gewebe und Organe
3. Urin
4. Abstriche
5. Stuhl
6. Liquor

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Untersuchungsmaterialien

1. Blut
2. Gewebe und Organe
3. Urin
4. Abstriche
5. Stuhl
6. Liquor

Urin

Mittelstrahlurin:

• Sammeln des Urins in sterilem Gefäß
• Erste & letzte Fraktion verwerfen
• Harnstrahl darf nicht unterbrochen werden

24h-Sammelurin

• Sammeln des Urins in entsprechenden Sammelbehälter
• Sammlung beginnt nach 1. Morgenurin & endet nach 1.Morgenurin
• Eliminierung tageszeitlicher Schwankungen einzelner Parameter
• Für mikrobiologische Untersuchungen ungeeignet

Blasenkatheterurin:

• Entnahme direkt aus Blase durch Katheter
• Erste 200 ml verwerfen
• Vorwiegend mikrobiologische Fragestellung

Blasenpunktionsurin:

• Nach 24 Uhr Blase nicht entleeren
• Morgens 0,5 l Tee trinken
• 2-3h später suprapubische Blasenpunktion
• Für mikrobiologische Fragestelllungen

Urintauchkulturen:

• nach Gewinnung der Probe wird Nährboden vollständig mit Probe bedeckt
• überflüssigen Urin abfließen lassen
• für mikrobiologische Fragestellungen

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Blut

Vollblut

• enthält korpuskuläre (Erythrozyten, Leukozyten, Thrombozyten) und flüssige Bestandteile
• → Vollblut = Blutzellen + Serum + Gerinnungsfaktoren

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Plasma

• Vollblut + Antikoagulanzien
• gerinnt nach der Abnahme nicht
• durch Zentrifugation werden zelluläre Bestandteile von dem flüssigen Überstand getrennt
• → Plasma = zellfreier, flüssiger Bestandteil des Vollblutes inkl. Gerinnungsfaktoren

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Serum

• Vollblut ohne Zusätze
• nachdem die Gerinnung abgeschlossen ist, wird das Serum durch Zentrifugation gewonnen
• Blutkuchen und flüssige Bestandteile werden separiert
• → Serum = zellfreier, flüssiger Bestandteil ohne Gerinnungsfaktoren

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Vorteile Plasma:

• höhere Ausbeute
• Zeitgewinn
• keine Störung durch Nachgerinnung
• bessere Darstellung des in vivo-Status

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Nachteile Plasma:

• Störungen durch Fibrinogen
• Störungen durch Antikoagulantien
• Kontamination durch Kationen

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Abnahme erfolgt:

-          Venös/arteriell oder kapillar

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venöse Blutabnahme

Bedingungen:

• möglichst zwischen 7.00 – 9.00 Uhr
• nüchtern (12-14h Nahrungskarenz) à nicht immer erforderlich
• vor Blutabnahme 5-10 min ruhig sitzen/liegen
• veränderliche Einflussgrößen beachten
• bei Medikamenteneinnahme im Tal abnehmen

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Technik:

• am liegenden Patienten empfohlen (bei Verlaufskontrolle gleiche Position)
• weitlumige Punktionskanülen
• Stauungszeit 30 Sekunden
• zu starke Aspiration  vermeiden

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keine Blutentnahme

• an geröteten. geschwollenen, infizierten Hautstellen
• in der Nähe von Ödemen
• an vernarbten Venen
• am Infusionsarm
• aus Katheter

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Reihenfolge der Blutentnahme !

1. Blutkulturen (Sterilität)
2. Vollblut ohne Zusätze
3. Citratblut für Gerinnungsuntersuchungen (wenn kein Serum gefordert, dann erste Fraktion verwerfen
4. Heparinblut
5. EDTA-Blut für hämatologische Untersuchungen
6. Citratgepuffertes NaF für Glukose-, Laktat, Pyruvat

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Stuhl

• bakterielle, virologische oder klinisch-chemische Untersuchung
• ungewöhnliche Beimengungen gezielt entnehmen
• haselnussgroße Menge
• Lagerung bei 4° um Vermehrung der Bakterien zu vermeiden

Liquor

• wichtig zur Diagnose von Erkrankungen des ZNS
• zeitgleich muss immer eine Serum-Monovette mit abgenommen werden →wichtig für die Beurteilung best. Parameter
• Polycarbonat- und Glasröhrchen sind wegen Adsorption von IgG ungeeignet

Monovettenarten

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