Genexpressie – Transcriptie, RNA-processing & Turnover

De richting van de genetische informatiestroom

  • Genetische informatie-stroom: DNA → RNA → eiwit
    • Replicatie: \text{DNA} \xrightarrow{\text{Dd-DP}} \text{DNA}
    • Transcriptie: \text{DNA} \xrightarrow{\text{Dd-RP}} \text{RNA}
    • Translatie: \text{mRNA} \xrightarrow{\text{ribosoom}} \text{polypeptide}
  • Alle hoofdklassen RNA’s ontstaan via transcriptie:
    • mRNA, tRNA, rRNA, lncRNA, snRNA, snoRNA, enz.
  • In prokaryoten gebeurt transcriptie en translatie gelijktijdig; in eukaryoten ruimtelijk/-tijds gescheiden (kern vs. cytosol).

Centrale dogma & uitzonderingen

  • Klassiek schema (Crick) kent vier polymerase-typen:
    • Dd-DP (DNA-afhankelijk DNA-pol)
    • Dd-RP (DNA-afhankelijk RNA-pol)
    • Rd-DP (RNA-afhankelijk DNA-pol = reverse transcriptase)
    • Rd-RP (RNA-afhankelijk RNA-pol)
  • Uitzonderingen:
    • Reverse transcriptie (retrovirussen, retrotransposons, telomerase).
    • RNA-replicatie door Rd-RP (RNA-virussen, sommige eukaryoten).
  • Virusvoorbeelden: (+)ssRNA SARS-CoV-2 (Rd-RP), (−)ssRNA Influenza, retrovirus HIV (Rd-DP + integratie), dsRNA Rotavirus, dsDNA HPV.
  • Telomerase: ribonucleoproteïne met dubbele activiteit
    • \text{Rd-DP} verlengt telomeren
    • \text{Rd-RP} betrokken bij siRNA-silencing.

Prokaryoten vs. eukaryoten – algemene vergelijking

  • Prokaryoten: 1 RNA-polymerase + σ-factor, geen kern, snelle respons (co-transcriptionele translatie).
  • Eukaryoten: 3 RNA-polymerasen (I → rRNA, II → mRNA/lncRNA, III → tRNA/5S rRNA), nood aan algemene transcriptiefactoren, mRNA-processing + export als extra regulatielaag.

Prokaryotische transcriptie – mechanisme

  • RNA-polymerase holo-enzym = \alpha_2\beta\beta'\sigma.
  • Promotorconsensus:
    • \text{−35 box: TTGACA}
    • \text{−10 box (Pribnow): TATAAT}
    • UP-element stroomopwaarts; discriminator downstream.
  • Initiatie
    • σ bindt −10/−35, α bindt UP.
    • Helicase-activiteit ontvouwt 14 bp → transcription bubble.
    • Abortieve initiatie + DNA-scrunching zonder primer.
  • Elongatie
    • ‘Promoter escape’: σ valt af, pol glijdt 3′→5′ over matrijs; RNA groeit 5′→3′.
    • Proofreading: pyrofosfolyse (PPi-terugreactie) & backtracking-hydrolyse.
  • Terminatie
    • Rho-onafhankelijk: GC-haarspeld + U-spoor.
    • Rho-afhankelijk: Rho (ATP-helicase) bindt rut-site, breekt RNA-DNA hybride.

Eukaryotische transcriptie – mechanisme

  • Promotortypen
    • Pol I: kernpromotor + upstream control element.
    • Pol II: Inr, TATA, BRE, DPE (TATA-/TATA-less promotors).
    • Pol III: interne A- en B-boxen (tRNA) of C-box (5S).
  • Pre-initiatiecomplex (PIC)
    • Algemene TF’s (TFIIA, B, D (TBP), E, F, H) + pol II.
    • TFIIH = ATP-helicase + kinase: fosforyleert CTD (Ser5 → initiatie; Ser2 → elongatie).
  • Elongatie / terminatie
    • Vergelijkbaar kanaalsysteem als prokaryoten; nucleosoom-remodellering vereist.
    • Terminatieresolutie:
      • Pol I: 18-nt signaal + eiwit.
      • Pol II: knip 10–35 nt na \text{AAUAAA} → polyadenylatie.
      • Pol III: poly-U.
  • α-Amanitine (Amanita phalloides) remt pol II → leverfalen.

RNA-processing: rRNA

  • rRNA = 70–80 % van totaal RNA.
  • Eukaryoot
    • Nucleolus (NOR-clusters): pre-rRNA 45S door pol I → processing → 18S, 5.8S, 28S.
    • 5S rRNA apart door pol III.
    • snoRNAs (+ snoRNPs) dirigeren 2′-O-methylaties & pseudouridylaties.
  • Prokaryoot: polycistronische pre-rRNA (23S, 16S, 5S) met spacers.

RNA-processing: tRNA

  • Pre-tRNA: leader & trailer wegknippen, eventueel intron-splicing door RNA-endonuclease+ligase.
  • 10–15 % basen chemisch gemodificeerd (methylaties, inosine-vorming = RNA-editing).

RNA-processing: mRNA (eukaryoot)

  • 5′-capping
    • 7-methyl-G via 5′–5′ trifosfaatbinding; extra ribose-methylaties mogelijk.
    • Bescherming + ribosoomherkenning.
  • 3′-polyadenylatie
    • Cut 10–35 nt na \text{AAUAAA}; Poly(A)-polymerase voegt \approx 200 A’s toe zonder template.
    • ↑ stabiliteit, export, translatiestimulatie.
  • Splicing
    • Intron consensus: 5′ GU…AG 3′ + branch-point A.
    • Spliceosoom: snRNAs U1/U2/U4/U5/U6 + >200 eiwitten.
    • Lariat-mechanisme, co-/post-transcriptioneel.
    • Exon-junction complex (EJC) rekruteert NXF1 voor export, medieert NMD.
  • Alternatieve splicing
    • >95 % humane multiexon-genen; versterker/silencer-elementen + SR-/hnRNP-eiwitten.
    • Leidt tot proteoomexpansie (>100 000 eiwitten op ~25 000 genen).
  • Klinische relevantie: fouten in splicing ≈15 % erfelijke ziekten (SMA, DMD, retinitis pigmentosa, enz.).
  • Progeria (HGPS)
    • Puntmutatie in exon 11 van lamine A → cryptische 5′ splice site → deletie 150 nt → progerin.

RNA-editing

  • Def.: co-/post-transcriptionele aanpassing van nucleotidesequentie.
  • Adenosine → Inosine (A-to-I) door ADAR in tRNA, mRNA, miRNA.
  • Cytidine → Uridine (C-to-U) in APOB-mRNA: verschil APOB100 (lever) vs. APOB48 (darm).
  • Insertion/deletion editing: trypanosoma-mitochondriën via guide-RNA’s (U-inserties).
  • DNA-editing parallel: APOBEC3G deamineert dC in ssDNA → G→A hypermutaties (antiviraal, maar HIV Vif neutraliseert).

RNA-turnover & amplificatie

  • Halfwaardetijd mRNA: <30 min (bacterie) tot dagen (eukaryoot).
    • Bepaald door poly(A)-lengte, AU-rijke 3′ UTR-elementen.
    • Gemeten met pulse-chase.
  • rRNA/tRNA zeer stabiel; mRNA hoog-turnover → snelle regulatie + enorme amplificatie:
    • Voorbeeld zijderups: 2 fibroïne-genen → 10^9 eiwitten/cel in 4 d.

Key-technieken voor DNA-eiwit-interacties

  • EMSA: mobiliteitsshift van gelabeld DNA met/zonder eiwit.
  • DNA-footprinting: DNase I + partiële vertering → ‘voetafdruk’ beschermde basen.
  • ChIP (chromatine-immunoprecipitatie)
    • Crosslink, sonicatie, IP met antilichaam; analyse via PCR, microarray (ChIP-chip) of NGS (ChIP-seq).

Medische implicaties & toxines

  • α-Amanitine vergiftiging (groene knolamaniet): remt pol II → fatale leverafbraak.
  • Systemic lupus erythematosus: auto-antilichamen tegen snRNPs → wijdverspreide splicing-defecten.
  • ACE2 als receptor voor SARS-CoV-2; Rd-RP essentieel antiviraal doeleiwit.

Concept-checks – samenvatting

  • Componenten & locatie: 1 RNA-pol (PROK) vs. 3 RNA-pol (EUK); kern scheidt transcriptie/translatie.
  • Mechanistische vergelijking
    • Gelijk: de novo synthese, directionele polymerisatie, abortieve initiatie + proofreading.
    • Verschillend: promotorarchitectuur, TF-behoefte, terminatiesignalen.
  • Spliceosoomuitval (lupus) → massale ORF-verstoring, NMD, foutieve eiwitten → ernstige pathologie.